染色質(zhì)免疫共沉淀Chromatin Immunoprecipitation, ChIP 技術是在活細胞狀態(tài)下固定蛋白質(zhì)－DNA復合物，并將其隨機切斷為一定長度范圍內(nèi)的染色質(zhì)小片段，然后通過免疫學方法沉淀此復合體，特異性地富集目的蛋白結合的DNA的片段，通過對目的片斷的純化與檢測，從而獲得蛋白質(zhì)與DNA相互作用的信息。

       該技術通過蛋白質(zhì)與DNA互作來分析目標基因活性以及已知蛋白質(zhì)的靶基因，被廣泛應用于體內(nèi)轉錄調(diào)控因子與靶基 因啟動子上特異核苷酸序列結合方面的研究。CHIP不僅可以檢測體內(nèi)反式因子與DNA的動態(tài)作用，還可以用來研究組蛋白的各種共價修飾與基因表達的關系。

       ChIP-seq 的原理：將ChIP與第二代測序技術相結合的ChIP-Seq技術，能夠高效地在全基因組范圍內(nèi)檢測與組蛋白、轉錄因子等互作的DNA區(qū)段。其原理是：首先通過染色質(zhì)免疫共沉淀技術（ChIP）特異性地富集目的蛋白結合的DNA的片段，并對其進行純化與文庫構建；然后對富集得到的DNA的片段段進行高通量測序。研究人員通過將獲得的數(shù)百萬條序列標簽精確定位到基因組上，從而獲得全基因組范圍內(nèi)與組蛋白、轉錄因子等互作的DNA區(qū)段信息。

       ATAC-seq:（Assay for Transposase-Accessible Chromatin with high throughput sequencing）是用于研究染色質(zhì)可及性（通常也理解為染色質(zhì)的開放性）的方法， 原理是通過轉座酶Tn5容易結合在開放染色質(zhì)的特性，然后對Tn5酶捕獲到的DNA序列進行測序。

       開放染色質(zhì)的研究方法有ATAC-seq以及傳統(tǒng)的DNase-Seq及FAIRE-seq等，ATAC-Seq由于所需細胞量少，實驗簡單，可以在全基因組范圍內(nèi)檢測染色質(zhì)的開放狀態(tài)，目前已經(jīng)成為研究染色質(zhì)開放性的重要技術方法。

ChIP-seq 和ATAC-seq 的異同：

       ATAC-Seq與ChIP-Seq的不同的是ATAC-Seq是全基因組范圍內(nèi)檢測染色質(zhì)的開放程度，可以得到全基因組范圍內(nèi)的蛋白質(zhì)可能結合的位點信息，一般用于不知道特定的轉錄因子，用此方法與其他方法結合篩查感興趣的特定調(diào)控因子；但是ChIP-Seq是明確知道感興趣的轉錄因子是什么，根據(jù)感興趣的轉錄因子設計抗體去做ChIP實驗拉DNA，驗證感興趣的轉錄因子是否與DNA存在相互作用。ATAC-Seq、ChIP-Seq、Dnase-Seq、MNase-Seq、FAIRE-Seq整體的分析思路一致，找到富集區(qū)域，對富集區(qū)域進行功能分析。

       DAP-seq(DNA affinity purification sequencing) 是一種高通量篩選TF結合位點的方法，用體外表達的TFs來結合基因組DNA。 DAP-seq將蛋白質(zhì)體外表達技術與高通量測序技術相結合，不需要針對每個轉錄因子制備特異性抗體，所以DAP-seq具有快速、高通量、節(jié)約時間成本等顯著優(yōu)勢。

       DAP-seq是研究非模式植物順反組和表觀組的有力技術，大大擴展和加深了科學家們研究的轉錄因子結合位點信息。它能夠捕獲全部轉錄結合位點，因此能獲得完整的密碼本。

      DAP-seq 與 CHIP-seq 的異同：CHIP-seq如上所述，是一種常見的用來發(fā)現(xiàn)轉錄因子結合位點的方法，但是，它有很強的局限性，例如：它很強地依賴于抗體的質(zhì)量， 并且對發(fā)現(xiàn)低表達的蛋白有挑戰(zhàn)。雖然ATAC-seq 可以更簡單地來注釋跨越許多生物體和細胞類型的全基因組調(diào)控元素。但是：如果沒有對TF序列特異性的全面了解，所識別區(qū)域的靶向TFS就無法被輕易地驗證。DAP-seq 可以用來揭示基因組范圍內(nèi)所有調(diào)控元件的特征。